Влияние пробиотических штаммов эшерихий и энтерококков на активность кишечных пищеварительных ферментов при коррекции экспериментального дисбиоза у крыс

В опытах на крысах «Вистар» сопоставлены эффекты пробиотических штаммов бактерий Enferococcus faecium L3 и Escherichia coli M17 в отношении восстановления микробиоты и активности кишечных пищеварительных ферментов после экспериментального дисбиоза. Дисбиоз вызывали введением внутрижелудочно в течение трех дней ампициллина и метронидазола. Затем животным вводили внутрижелудочно в течение пяти дней пробиотики, содержащие E. faecium L3 (E. f.), E. coli M17 (E. c.), или молоко (контроль-1, К1). В контроле К0 крысам вместо антимикробных препаратов вводили воду, а затем молоко. Активности ферментов в слизистой оболочке тонкой кишки оценивали биохимическими методами, а состав микробиоты - бактериологически и методом ПЦР в режиме реального времени. После применения E. f. наблюдалось более быстрое восстановление кишечной микробиоты, чем после применения E. c. или в группе К1 (без пробиотика). В группе К1 были повышены по сравнению с контролем К0 (без антимикробных препаратов и пробиотиков) активности мальтазы, лактазы, щелочной фосфатазы и аминопептидазы N в тонкой кишке. Применение пробиотиков E. f. и E. c. не влияло на восстановление активности аминопептидазы N, но сопровождалось частичным восстановлением активности щелочной фосфатазы и тенденцией к восстановлению активности мальтазы, а в случае пробиотика E. f. наблюдалось также полное восстановление активности лактазы. Таким образом, пробиотические бактерии E. faecium L3 по сравнению с E. coli M17 более эффективны при восстановлении микробиоты и активности некоторых ключевых кишечных ферментов (в частности, лактазы) после нарушений, вызванных кишечным дисбиозом.

кишечник, пищеварительные ферменты, микробиота

1. Уголев А.М. Теория адекватного питания и трофология. // А.: Наука. - 1991. - 272 с.

2. Шендеров Б. А. Медицинская микробная экология и функциональное питание. // М.: Издательство Грантъ. - 1998. - Т. 1 (Микрофлора человека и животных и ее функция). - 288 с.

3. Ткаченко Е.И., Успенский Ю.П. Питание, микробиоценоз и интеллект человека. // СПб. - 2006. - 560 с.

4. Cani P. D., Delzenne N. M. The role of the gut microbiota in energy metabolism and metabolic disease. // Current Pharmaceutical Design. - 2009. - Vol. 15. - P. 1546-1558.

5. Goldin B. R., Gorbach S. L. Clinical indication for probiotics; An Overview. // Clinical Infectious D'iseases. - 2008. - Vol. 46. - Р. 96-100.

6. Громова А.В., Алексеева А.С., Дмитриева Ю.В., Савочкина Е.В., Груздков А.А., Котылева М.П., Ермоленко Е.И., Суворов А.Н. Влияние пробиотических бактерий на пищеварение в кишечнике при коррекции экспериментального дисбиоза у крыс // Медицинский алфа-вит. - 2017. - Т. 1 (Практическая гастроэнтерология), № 9. - С. 46-49.

7. Ermolenko E., Gromova L., Borshchov Yu., Voeikova A., Karaseva A., Ermolenko K., Gruzdkov A., Suvorov A. Influence of different probiotic lactic acid bacteria on microbiota and metabolism of rats with disbiosis. // Bioscience of Microbiota, Food and Health. - 2013. - Vol. - 32, № 2. - P. 41-49.

8. Ермоленко Е.И., Донец В.Н., Дмитриева Ю.В., Ильясов Ю.Ю., Суворова М.А., Громова А.В. Влияние пробиотических энтерококков на функциональные характеристики кишечника крыс при дисбиозе, индуцированном антибиотиками. // Вестник Санкт-Петербургского университета. Серия 11. Медицина. - 2009. Вып. № 1. - C. 157-167.

9. Тимофеева Н.М. Иезуитова Н.Н., Громова А.В. Современные представления о всасывании моносахаридов, аминокислот и пептидов в тонкой кишке млекопитающих. // Успехи физиологических наук. - 2000. - Т. 31, № 4. - С. 24-37.

10. Lin A.H., Nichols B.L., Quezada-Calvillo R., Avery S.E., Sim L., Rose D.R., Naim H.Y., Hamaker B.R. Unexpected high digestion rate of cooked starch by the Ct-maltase-glucoamy-lase small intestine mucosal a-glucosidase subunit // PLos One. - 2012. - V. 7, № 5; e35473.

11. Lallès J.P. Intestinal alkaline phosphatase; novel functions and protective effects // Nutr. Rev. - 2014. - Vol. 72, № 2. - P. 82-94.

12. Tuin A., Poelstra K., de Jager-Krikken A. et al. Role of alkaline phosphatase in colitis in man and rats 11 Gut, 2009. - V. 58, № 3. - P. 379-387.

13. Estaki M., DeCoffe D., Gibson D.L. Interplay between intestinal alkaline phosphatase, diet, gut microbes and immunity // World J. Gastroenterol. - 2014. - Vol. 20, № 42. - P. 15650-15656.

14. Kramer W., Girbig F., Corsiero D., Pfenninger A., Frick W.et al. Aminopeptidase N (CD 13) is a molecular target of the cholesterol absorption inhibitor ezetimibe in the enterocyte brush border membrane // J. Biol. Chem. - 2005. - Vol. 280, № 2. P. - 1306-1320.

15. Melkebeek V., Rasschaert K., P Bellot P., Tilleman K., Favoreel H., et al. Targeting aminopeptidase N, a newly identified receptor for F4ac fimbriae, enhances the intestinal mucosal immune response // Mucosal Immunol. - 2012. - Vol. 5, № 6. - P. 635-645.

16. Bank U., Tadje M., Wolke C., Bukowska A., Ittenson A., et al. Inhibition of alanyl-aminopeptidase on CD4+CD25+ regulatory T-cells enhances expression of FoxP3 and TGF-beta1 and ameliorates acute colitis in mice.// Int. Mol. Med. - 2007, Oct. - Vol. 20, № 4. - P. 483-492.