Диффузионная способность легких у детей с онкогематологическими заболеваниями после трансплантации гемопоэтических стволовых клеток

В статье представлены результаты исследования диффузионной способности легких (ДСЛ) по монооксиду углерода методом одиночного вдоха (DLco) у детей с острыми лейкозами (ОЛ) и приобретенными идиопатическими апластическими анемиями (ПИАА) после аллогенной трансплантации гемопоэтических стволовых клеток (ТГСК). Проведен сравнительный анализ показателя DLco до ТГСК и на 30- е, 90-е, 180-е, 360-е сутки после неё. Выявлено его достоверное необратимое снижение начиная с 30 суток в течение года наблюдения у большинства пациентов с ОЛ. У детей с ПИАА также зарегистрировано значимое снижение ДСЛ через месяц наблюдения, однако к году динамического контроля изменения были менее выражены, чем в группе острых лейкозов, и среднее значение DLco восстанавливалось до предтрансплантационных показателей. Данный метод важно использовать в комплексной оценке функционального состояния дыхательной системы для своевременной диагностики легочных осложнений после ТГСК.

1. Michelson, P.H., Goyal R., Kuriand G. Pulmonaly complications of haematopoietic cell transplantations in children / Pediatr Respir Rev – 2007; 8: 46–61.

2. Arbetter K. R. Prakash U. B., Tazelaar H. D., Douglas W.W. Radiation-induced pneumonitis in the «nonirradiated» lung. Mayo Clin. Proc.– 1999.74: 27–36

3. de Fijter W.M., Roumen R.M., Lybeert M.L., de Munck D.R., Luiten E.J. Pulmonary damage after radiotherapy for breast cancer. Ned. Tijdschr. Geneeskd.–1999. 143 (16): 833–836.

4. Berkey F.J. Managing the adverse effects of radiation therapy. Am Fam Phys.– 2010. 82:381–388, 394.

5. Massie M.J. Prevalence of depression in patients with cancer. J Natl Cancer Inst Monogr.– 2004:57–71. Jereczek-Fossa B.A., Marsiglia H.R., Orecchia R. Radiotherapy-related fatigue. Crit Rev Oncol Hematol.– 2002. 41:317–25.

6. Adams M.J., Lipshultz S.E., Schwartz C., Fajardo L.F., Coen V., Constine L.S. Radiation-associated cardiovascular disease: Manifestations and management. Semin Radiat Oncol.– 2003.13:346–56.

7. Marks L.B., Carroll P.R., Dugan T.C., Anscher M.S. The response of the urinary bladder, urethra, and ureter to radiation and chemotherapy. Int J Radiat Oncol Biol Phys.– 1995. 31:1257–1280.

8. Семищева Н.Л., Карапетян Е.И., Мальцева Т.А., Авдеева Н.В., Одиреев А.Н. Постлучевой пневмонит в практике пульмонолога // Бюллетень – 2014–53: 137–142.

9. Попова Е.Н. Лекарственно-индуцированные поражения легких // Практическая пульмонология – 2007.

10. Гладилина И.А., Шабанов М.А., Кравец О.А., Захидова Ф.О., Иванов С.М., Федосеенко Д.И. с соавт. Постлучевые повреждения легких / Онкологический журнал– 2020. 3(2): 9–18.

11. Kim J.H., Jenrow K.A., Brown S.L. Mechanisms of radiation-induced normal tissue toxicity and implications for future clinical trials. Radiat. Oncol.J.– 2014. 32:103–115.

12. Bentzen S.M. Preventing or reducing late side effects of radiation therapy: Radiology meets molecular pathology/ Nature Rev. Cancer – 2006. 6: 702–713.

13. Mikkelsen R.B., Wardman P. Biological chemistry of reactive oxygen and radiation-induced signal transduction mechanisms / Oncogene – 2003. 22: 5734–5754.

14. Fleckenstein K., Zgonjanin L. Temporal onset of hypoxia and oxidative stress after pulmonary irradiation. Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys.– 2007. 68: 196–204.

15. Martin M. Lefaix J.L., Delanian S. TGF-β1 and radiations fibrosis: A master switch and specific therapeutic target? Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys.– 2000. 47: 277–290.

16. Rubin R.L. Drug-induced lupus // Toxicology – 2005. 209(2):1245–59.

17. Даниленко А.А., Шахтарина С.В. Ранние и поздние легочные осложнения лучевой терапии лимфомы Ходжкина. // Пульмонология – 2013 (6): 92-98.

18. Theuws J., Kwa S., Wagernaar A., Seppenwoolde Y., Boersma L.J., Damen E.M. et al. Predictors of overall pulmonary function loss in relation to 3-D dose distributions for patients with breast cancer and malignant lymphoma/ Radiother. Oncol.– 1998. 49: 233–243.

19. Грилли М.А. Патофизиология легких / Пер. с.англ. под ред. Ю.В. Наточина/ М. БИНОМ.– 2005: 27–48.

20. Уэст Д.Б. Патофизиология органов дыхания / Пер. с англ. под ред. А.И. Синопальникова / М. БИНОМ – 2005: 44–48.

21. Савушкина О.И., Неклюдова Г.В., Черняк А.В. Теоретические, методические и клинические аспекты исследования диффузионной способности легких. Бюллетень – 2016. 59: 119–124.

22. Wanger J., Clausen JL, Coates A., Pedersen O.F., Brusasco V., Burgos F. Standardisation of the measurement of lung volumes. Eur. Respir. J.– 2005; 26(3): 511–522.

23. Ogilvie C.M., Forster R.E., Blakemore W.S., Morton J.W. A standardized breath holding technique for the clinical measurement of the diffusing capacity of the lung for carbon monoxide. J. Clin. Invest. 1957; 36 (1, Pt 1): 1–17.

24. Graham B.L., Brusasco V., Burgos F, Cooper B.G., 4, Jensen R., Kendrick A. 2017 ERS/ATS standards for single-breath carbon monoxide uptake in the lung. Eur. Respir. J. 2017; 49 (1).

25. Неклюдова Г.В., Черняк А.В. Клиническое значение исследования диффузионной способности легких. Пульмонология и аллергология – 2013. 4: 54–59.

26. Pellegrino R., Viegi G., Brusasco V., Crapo R.O., Burgos F., R Casaburi et al. Interpretative strategies for lung function tests. Eur. Respir. J.– 2005. 26 (5): 948–968.

27. Кудинова Т.В., Скворцова Ю.В., Бостанов Д.Е. Возможности импульсной осциллометрии в диагностике функции легких у детей после аллогенной трансплантации гемопоэтических стволовых клеток / Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии. 2022–21 (2): 140–145.

28. MacIntyre N., Crapo R.O., Viegi G, Johnson D.C., C. P. M. van der Grinten, Brusasco V. et al. Standardization of the single-breath determination of carbon monoxide uptake in the lung. Eur. Respir. J.– 2005. 26(4): 720–735.

29. Johnson D.C. Importance of adjusting carbon monoxide diffusing capacity (DLCO) and carbon monoxide transfer coefficient (KCO) for alveolar volume. Resp.Med.J.– 1994. 1: 28–37.

30. Michael J., Hughes B., Neil B. Pride. Examination of the carbon monoxide diffusing capacity (DL(CO)) in relation to its KCO and VA components. Am.J. Respir. Crit. Care Med.– 2012. 186(2):132–139.