Актуальные аспекты подготовки тромбоцитов человека к использованию в регенеративной медицине
Аннотация
В статье рассматриваются вопросы, связанные с подготовкой тромбоцитов человека для разных целей регенеративной медицины, в свете совершенствования методик запуска и реализации биологического потенциала тромбоцитов.
Об авторе
М. С. Макаров
ГБУЗ «Научно-исследовательский институт скорой помощи имени Н. В. Склифосовского» департамента здравоохранения г. Москвы
Россия
Россия
Список литературы
1. Ваза А. Ю., Макаров М. С., Сластинин В. В., Боровкова Н. В., Клюквин И. Ю., Похитонов Д. Ю., Пономарев И. Н. Эффективность комбинации аллогенной богатой тромбоцитами плазмы с коллагеном при лечении дефектов бедренной кости у крыс // Трансплантология. -2016.-№ 2.- С. 36-44.
2. Высочин И. В., Кобзева Е. Н. Криоконсервирование тромбоцитов. Технологические подходы замораживания и методы контроля качества (обзор литературы) // Трансфузиология.--2012.- № 4, Т. 13.-С. 31-41.
3. Высочин И. В., Макаров М. С., Кобзева Е. Н. Влияние технологии инактивации патогенов на качество клеток тромбоцитных концентратов // Вестник гемато-логии.-2016.- Т. 12, № 4.-С. 32-33.
4. Губанова М. Н., Мадзаев С. Р., Жибурт Е. Б. Распространенность и встречаемость инфекций у доноров крови в России // Вопросы вирусологии.-2015.-Т. 60, № 6.- С. 29-31
5. Жибурт Е. Б., Коденев А. Т., Ващенко Г. А., Капустов В. И. Совершенствование получения концентрата тромбоцитов // Вестник службы крови России.- 2010.- № 2.- С. 22-25.
6. Жибурт Е. Б. Переливание крови: новые возможности // Поликлиника.- 2015.- № 7.- С. 93-96.
7. Макаров М. С., Боровкова Н. В., Кобзева Е. Н., Высочин И. В., Хватов В. Б. Способ оценки морфофункционального статуса тромбоцитов человека и его применение в клинической практике // Медицинский Алфавит. Современная лаборатория. - 2012.- № 3.- С. 32-34.
8. Макаров М. С., Кобзева Е. Н., Высочин И. В., Боровкова Н. В. Хватов В. Б. Применение витального окрашивания для морфофункционального анализа тромбоцитов человека короткого хранения // Альманах клинической медицины. - 2014. - № 30.- С. 83-87.
9. Макаров М. С., Боровкова Н. В., Хватов В. Б., Кобзева Е. Н. Влияние центрифугирования на биологическую полноценность тромбоцитов человека // Вестник службы крови России.- 2015.-№ 1.- С. 41-44.
10. Макаров М. С. Влияние высоких концентраций диметилсульфоксида на биологическую активность тромбоцитов человека в плазме // Медицинский Алфавит. Современная лаборатория. - 2016. - № 2.- С. 48-52.
11. Накастоев И. М., Грачев А.Е., Гемджян Э. Г., Цыба Н. Н., Журавлев В. В., Кречетова А. В., Кастрикина И. С., Ватагина Е. А., Рыжко В. В., Городецкий В. М. Клиническая эффективность переливаний концентратов тромбоцитов, подвергнутых инактивации патогенов // Терапевтический архив. - 2013.- Т. 85, № 8.- С. 77-80.
12. Оболенский В. Н., Ермолова Д. А., Макаров М. С., Конюшко О. И., Сторожева М. В., Боровкова Н. В., Лаберко Л. А., Семенова Т. В. Стимуляция регенераторных процессов в хронических ранах с помощью богатой тромбоцитами плазмы // Клиническая и экспериментальная хирургия. Журнал имени академика Б. В. Петровского. - 2016.- № 1.- С. 38-43.
13. Огородникова М. Д., Заботина Т. Н., Борунова А. А., Очеева Н. Ю., Кадагидзе З. Г., Рукавицын О. А. Влияние фотохимической обработки и гамма-облучения на экспрессию маркеров активации и апоптоза тромбоцитов // Вопросы гематологии, онкологии и иммунопатологии в педиатрии.- 2011.- Т. 10, № 1.- С. 15-20.
14. Потапский В. М., Неминущая Е. И. Алгоритм активизации донорского движения среди студентов и курсантов учебных заведений Москвы // Трансфузиология.- 2011.- Т. 12, № 3.- С. 4-16.
15. Руководство по приготовлению, использованию и обеспечению качества компонентов крови/ Европейский комитет по переливанию крови.- 16 изд.- Нанси (Франция): Bialec.-2010.-490 с.
16. Сергеева Н. С., Шанский Я. Д., Свиридова И. К., Кирсанова В. А., Ахмедова С. А., Кувшинова Е. А., Мейснер И. С. Биологические эффекты тромбоцитарного лизата при добавлении в среду культивирования клеток человека // Гены и клетки.- 2014.- Т. 9, № 1.- С. 77-85.
17. Хватов В. Б., Макаров М. С., Боровкова Н. В. Морфологическая оценка адгезивной активности тромбоцитов с помощью витального окрашивания // Клиническая лабораторная диагностика. - 2013.- № 7.- С. 58-61.
18. Amable P. R., Carias R. B., Teixeira M. V., da Cruz Pacheco I., Correa do Amaral R.J., Granjeiro J. M., Borojevic R. Platelet-rich plasma preparation for regenerative medicine: optimization and quantification of cytokines and growth factors // Stem Cell Res. Ther. - 2013.- Vol. 4, № 3.- P. 67.
19. Anitua E., Andia I., Ardanza B., Nurden P., Nurden A. T. Autologous platelets as a source of proteins for healing and tissue regeneration // Thromb. Haemost.-2004.- Vol. 91, № 1.- P. 4-15.
20. Civinini R., Macera A., Nistri L., Redl B., Innocenti M. The use of autologous blood-derived growth factors in bone regeneration // Clinical Cases in Mineral and Bone Metabolism.- 2011.- Vol. 8, № 1.- P. 25-31.
21. Copland I. B., Garcia M. A., Waller E.K., Roback J. D., Galipeau J. The effect of platelet lysate fibrinogen on the functionality of MSCs in immunotherapy // Biomaterials.- 2013.- Vol. 34, № 32.- P. 7840-7850.
22. Freire V., Andollo N., Etxebarria J., Duran J. A., Morales M. C. In vitro effects of three blood derivatives on human corneal epithelial cells // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci.-2012.- Vol. 53, № 9.- P. 5571-5578.
23. Golebiewska E. M., Poole A. W. Secrets of platelet exocytosis - what do we really know about platelet secretion mechanisms? // Br. J. Haematol.-2014. - Vol. 165, № 2.- P. 204-216.
24. Italiano J. E., Richardson J. L., Patel-Hett S., Battinelli E., Zaslavsky A., Short S., Ryeom S., Folkman J., Klement G. L. Angiogenesis is regulated by a novel mechanism: Pro- and anti-angiogenic proteins are organized into separate platelet {alpha}-granules and differentiall released // Blood.- 2008.- Vol. 111, № 3.- P. 1227-1233.
25. Keil S. D. Bengrine A., Bowen R., Marschner S., Hovenga N., Rouse L., Gilmour D., Duverlie G., Goodrich R. P. Inactivation of viruses in platelet and plasma products using a riboflavin-and-UV-based photochemical treatment // Transfusion.- 2015.- Vol. 55, № 7.- P. 1736-1744.
26. Lannan K. L., Sahler J., Kim N., Spinelli S. L., Maggirwar S. B., Garraud O., Cognasse F., Blumberg N., Phipps R. P. Breaking the mold: transcription factors in the anucleate platelet and platelet-derived microparticles // Front. Immunol.- 2015.- Vol.6.- P. 48.
27. Malhotra A., Pelletier M., Oliver R., Christou C., Walsh W. R. Platelet-rich plasma and bone defect healing // Tissue Eng. Part A.- 2014.- Vol. 20, № 19-20.- P. 2614-2633.
28. Martinez C.E., Smith P. C., Palma Alvarado V. A. The influence of platelet-derived products on angiogenesis and tissue repair: a concise update // Front Physiol.- 2015.-Vol. 6.- P. 290.
29. Mazzocca A. D., McCarthy M.B., Chowaniec D. M., Dugdale E. M., Hansen D., Cote M. P., Bradley J. P., Romeo A. A., Arciero R. A., Beilzel K. The positive effects of different platelet-rich plasma methods on human muscle, bone, and tendon cells // Am. J. Sports Med.- 2012.- Vol. 40, № 8.- P. 1742-1749.
30. Mehta S., Watson J. T. Platelet rich concentrate: basic science and current clinical applications // J Orthop Trauma.-2008.- Vol. 22, № 6.- P. 432-438.
31. Mishra A., Tummala P., King A., Lee B., Kraus M., Tse V., Jacobs C. R. Buffered platelet-rich plasma enhances mesenchymal stem cell proliferation and chondrogenic differentiation // Tissue Eng. Part C. Methods.- 2009.- Vol. 15, № 3.- P. 431-435.
32. Michelson A. D. Platelets. 3rd ed.- Amsterdam: Academic Press, 2013, 1351 p.
33. Nomura S., Ozaki Y., Ikeda Y. Function and role of microparticles in various clinical settings // Thromb Res.- 2008.- Vol. 123, № 1.- P. 8-23.
34. Oktay А. O., Demiralp B., Demiralp B. Effects of platelet rich plasma and chitosan combination on bone regeneration in experimental rabbit cranial defects // The Journal of Oral Implantology.- 2010.- Vol. 36, № 3.- P. 175-184.
35. Pelttari K., Winter A., Steck E., Goetzke K., Hennig T., Ochs B. G., AignerT., Richter W. Premature induction of hypertrophy during in vitro chondrogenesis of human mesenchymal stem cells correlates with calcification and vascular invasion after ectopic transplantation in SCID mice // Arthritis Rheum.-2006.- Vol. 54, № 10.- P. 3254-3266.
36. Ramsey G. Hemostatic efficacy of pathogen-inactivated blood components // Semin. Thromb. Hemost.- 2016.- Vol. 42, № 2.- Р. 172-182.
37. Ranly А. M., McMillan J., Keller T. Platelet-derived growth factor inhibits demineralized bone matrix-induced intramuscular cartilage and bone formation: a study of immunocompromised mice // Journal of Bone and Joint Surgery A.-2005.- Vol. 87, № 9.- P. 2052-2064.
38. Roy S., Driggs J., Elgharably H., Biswas S., Findley M., Khanna S., Gnyawali U., Bergdall V. K., Sen C. K. Platelet-rich fibrin matrix improves wound angiogenesis via inducing endothelial cell proliferation // Wound Repair Regen.- 2011.- Vol. 19, № 6.- P. 753-766.
39. Van Aelst B., Feys H. B., Devloo R., Vanhoorelbeke K., Vandekerckhove P., Compernolle V. Riboflavin and amotosalen photochemical treatments of platelet concentrates reduce thrombus formation kinetics in vitro // Vox Sang.- 2015.- Vol. 108, № 4.- Р. 328-339.
40. Yun J. H., Han S. H., Choi S. H. Effects of bone marrow derived mesenchymal stem cells and platelet-rich plasma on bone regeneration for osseointegration of dental implants: preliminary study in canine three-wall intrabony defects // J. Biomed. Mater. Res. B. Appl. Biomater.-2014.- Vol. 102, № 5.- P. 1021-1030.
Рецензия
Для цитирования:
Макаров М.С. Актуальные аспекты подготовки тромбоцитов человека к использованию в регенеративной медицине. Медицинский алфавит. 2017;4(28):46-51.
For citation:
Makarov M.S. Actual aspects of human platelets preceeding treatments for use in regenerative medicine. Medical alphabet. 2017;4(28):46-51. (In Russ.)
Просмотров:
239
Послать статью по эл. почте 