Морфофункциональная перестройка тканей пародонта при снижении окклюзионной нагрузки (экспериментальное исследование)

Актуальность проблемы. Снижение жевательной нагрузки признается важным этиологическим фактором в развитии патологий пародонта. Однако комплексные исследования, объединяющие данные о морфологических, молекулярных и биомеханических изменениях в динамике, остаются актуальными.

Цель – провести комплексный анализ структурно-функциональных изменений тканей пародонта в условиях экспериментально воссозданной жевательной гипофункции.

Материалы и методы. В ходе контролируемого эксперимента на 60 половозрелых крысах моделировали жевательную гипофункцию путем перевода животных на мягкую диету на срок 12 недель. Для оценки использовали микро-КТ, гистологию, иммуногистохимию (RANKL, OPG), оценку экспрессии мРНК (COL1A1, ALP, TRAP) и биомеханическое тестирование.

 Результаты. Установлено, что гипофункция вызывает значительную ремоделировку пародонта: снижение объемной плотности кости (BV/TV) на 31,5%, толщины трабекул (Tb.Th) на 35,8% и их количества (Tb.N) на 36,1% (p<0,001). Выявлена атрофия периодонтальной связки с уменьшением толщины на 41,2%. Иммуногистохимический анализ показал повышение экспрессии RANKL в 2,5 раза и снижение OPG на 34%, что коррелировало с ростом активности TRAP в 2,1 раза. Снижение экспрессии COL1A1 (в 0,55 раза) и ALP (в 0,45 раза) подтвердило угнетение костеобразования. Биомеханические показатели демонстрируют снижение модуля упругости связки и устойчивости зуба на 42,5 и 41,8% соответственно.

Заключение. Полученные данные раскрывают патогенетические механизмы структурной деградации пародонта при гипофункции, что объясняет ускоренную потерю зубов и обосновывает необходимость адекватной функциональной нагрузки для поддержания его гомеостаза.

1. Rajvanshi A. K. Irving Langmuir – A Pioneering Industrial. Physical Chemist. Resonance. 2008;13(7):619–626. DOI: 10.1007/s12045-008-0068-z.

2. Kievit T. R. Quorum sensing in Pseudomonas auruginosa biofilms. Environ. Microbiol. 2009;1(2):279–288. DOI: 10.1111/j.1462-2920.2008.01792.x.

3. Bennett A. F., Lenski R. E. An experimental test of evolutionary trade-offs during temperature adaptation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2007;104:8649-8654. DOI: 10.1073/pnas.0702117104.

4. Zhao Z., Behm C., Tian Z., et al O. Cyclic tensile strain-induced yes-associated protein activity modulates the response of human periodontal ligament mesenchymal stromal cells to tumor necrosis factor-α // Arch Oral Biol. 2022. Vol. 143. P. 105527. DOI: 10.1016/j.archoralbio.2022.105527 EDN: SOBZRP.

5. Davies S.J., Gray R.J., Linden G.J., James J.A. Occlusal considerations in periodontics // Br Dent J. 2001. Vol. 191, N. 11. P. 597–604. DOI: 10.1038/sj.bdj.4801245

6. Komaki S., Ozaki H., Takahashi S.S., et al. Gingival blood flow before, during, and after clenching, measured by laser Doppler blood flowmeter: A pilot study // Am J Orthod Dentofacial Orthop. 2022. Vol. 161, N. 1. P. 46-52. DOI: 10.1016/j.ajodo.2020.06.045 EDN: KASBSK.

7. Nirola A., Batra P., Mohindra K., Kaur T. Role of Occlusion as a Risk Factor in Periodontal Disease // J Int Clinic Dental Res Org. 2020. Vol. 12, N. 2, P. 102–109. DOI: 10.4103/jicdro.jicdro_44_20 EDN: OMXWUK

8. Alkayyal M.A., Turkistani K.A., Al-Dharrab A.A., et al. Occlusion time, occlusal balance and lateral occlusal scheme in subjects with various dental and skeletal characteristics: A prospective clinical study // J Oral Rehabil. 2020. Vol. 47, N. 12. P. 1503–1510. DOI: 10.1111/joor.13095 EDN: CQFHIC

9. Foz A.M., Artese H.P., Horliana A.C., et al. Occlusal adjustment associated with periodontal therapy a systematic review // J Dent. 2012. Vol. 40, N. 12. P. 1025–1035. DOI: 10.1016/j.jdent.2012.09.002.

10. Wang Z., Lorenzi J.C.C., Muecksch F., Finkin S., Viant C., Gaebler C., Cipolla M., Hoffman H.H., Oliveira T.Y., Oren D.A. Enhanced SARS-CoV-2 Neutralization by Secretory IgA in vitro. ВioRxiv. 2020. DOI: 10.1101/2020.09.09.288555.