Preview

Медицинский алфавит

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Доступ платный или только для Подписчиков

Грамотрицательные госпитальные патогены в риске развития тяжелых бактериальных инфекций

https://doi.org/10.33667/2078-5631-2019-1-15(390)-31-35

Полный текст:

Аннотация

Внутрибольничные инфекции (ВБИ) остаются актуальной проблемой современной медицины. Наряду с бактериальной инфекцией кровотока (БИК) особую опасность представляют вентиляционно-зависимые легочные инфекции (ВЗЛИ), основными очагами которых по прежнему остаются отделения реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ).

Цель исследования. Оценка распространения бактериальных инфекций в ОРИТ за пятилетний период. Анализ тяжести течения послеоперационных осложнений в зависимости от локализации первичного очага инфекции.

Материалы и методы. Проведен ретроспективный анализ частоты и формы развития БИК и ВЗЛИ у пациентов, прооперированных в условиях искусственного кровообращения (ИК) с 2013 по 2017 год.

Результаты. Высеваемость из крови в отделениях колебалась в пределах 8,0–9,8 %; в ОРИТ этот показатель был достоверно выше и составил 17–24 % (р < 0,01). Летальность, ассоциированная с грамотрицательными возбудителями БИК и ВЗЛИ, достоверно выше по сравнению с грамположительными микроорганизмами р < 0,001. Наиболее часто встречающиеся представители грамотрицательной флоры — Acinetobacter spp. и Klebsiella spp. Анализ первичности обнаружения патогена показал, что в 73,6 % случаев сочетанной формы инфекции областью ее первоначальной локализации выступает трахея.

Заключение. Риск развития бактериальных осложнений в раннем послеоперационном периоде ассоциирован с представителями грамотрицательной флоры — Acinetobacter spp. и Klebsiella spp. Постоянный бактериологический мониторинг пациентов на предмет ВЗЛИ выступает эффективным прогностическим инструментом формирования группы риска среди пациентов ОРИТ.

Об авторах

Н. И. Габриэлян
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В. И. Шумакова» Минздрава России
Россия

д. м. н., зав. отделом, отдел эндотоксикозов и гнойно-септических осложнений

г. Москва



С. О. Шарапченко
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В. И. Шумакова» Минздрава России
Россия

лаборант-исследователь, отдел эндотоксикозов и гнойно-септических осложнений

г. Москва



И. В. Драбкина
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В. И. Шумакова» Минздрава России
Россия

врач-бактериолог лаборатории бактериологии, отдел эндотоксикозов и гнойно-септических осложнений

г. Москва



М. Х. Кубанова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В. И. Шумакова» Минздрава России
Россия

врач-бактериолог лаборатории бактериологии, отдел эндотоксикозов и гнойно-септических осложнений

г. Москва



Т. В.  Крупенио
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В. И. Шумакова» Минздрава России
Россия

врач-бактериолог лаборатории бактериологии, отдел эндотоксикозов и гнойно-септических осложнений

г. Москва



Л. Ю. Ромашкина
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В. И. Шумакова» Минздрава России
Россия

лаборант-исследователь, отдел эндотоксикозов и гнойно-септических осложнений

г. Москва



Т. Б. Сафонова
ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России
Россия

к. м. н., доцент кафедры микробиологии

г. Москва



М. И. Петрухина
ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России
Россия

к. м. н., доцент кафедры эпидемиологии

г. Москва



Л. Г. Столярова
ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России
Россия

к. б. н., доцент кафедры микробиологии

г. Москва



Список литературы

1. Friedrich AW. Control of hospital acquired infections and antimicrobial resistance in Europe: the way to go. // Wien Med Wochenschr. — 2019. — Jan 8; doi: 10.1007/s10354–018–0676–5.

2. Kim YJ, Kim SI, Lee YD, Choi HJ, Choi JY, Yoon SK, You YK, Kim DG. Carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii Bacteremia in Liver Transplant Recipients. // Transplant Proc. — 2018 — May. — 50 (4):1132–1135. doi: 10.1016/j.transproceed.2018.01.043.

3. McCann E, Srinivasan A, DeRyke CA, Ye G, DePestel DD, Murray J, Gupta V. Carbapenem-Nonsusceptible Gram-Negative Pathogens in ICU and Non-ICU Settings in US Hospitals in 2017: A Multicenter Study. // Open Forum Infect Dis. — 2018 — Sep 21; 5 (10): ofy241. doi: 10.1093/ofid/ofy241.

4. Ghajavand H., Esfahani BN., Havaei SA., Moghim S., Fazeli H. Molecular identification of Acinetobacter baumannii isolated from intensive care units and their antimicrobial resistance patterns. // Adv Biomed Res. — 2015. — May 29; 4: 110. doi: 10.4103/2277–9175.157826.

5. Vasudevan A., Mukhopadhyay A., Li J., Yuen EG., Tambyah PA. A prediction tool for nosocomial multi-drug Resistant Gram-Negative Bacilli infections in critically ill patients prospective observational study. // BMC Infect Dis. — 2014. — Nov 25; 14: 615. doi: 10.1186/s12879–014–0615-z.

6. Perni S., Thenault V., Abdo P., Margulis K., Magdassi S., Prokopovich P. Antimicrobial activity of bone cements embedded with organic nanoparticles. // Int J Nanomedicine. — 2015. — Oct 12; 10: 6317–29.

7. Lee CS., Vasoo S., Hu F., Patel R., Doi Y. Klebsiella pneumoniae ST147 coproducing NDM-7 carbapenemase and RmtF 16S rRNAmethyltransferase in Minnesota. // J Clin Microbiol. — 2014. — Nov; 52 (11): 4109–10.

8. Çiçek M., Hasçelik G., Müştak HK., Diker KS., Şener B. Accurate diagnosis of Pseudomonas luteola in routine microbiology laboratory: on the occasion of two isolates. // Mikrobiyol Bul. — 2016. — Oct; 50 (4): 621–624.

9. Rossi F., Girardello R., Cury AP., Di GioiaTS., Almeida JNJr., Duarte AJ. Emergence of colistin resistance in the largest university hospital complex of São Paulo, Brazil, over five years. // Braz J Infect Dis. — 2017. — Jan-Feb; 21 (1): 98–101. doi: 10.1016/j.bjid.2016.09.011.

10. Li X., Quan J., Yang Y., Ji J., Liu L., Fu Y., Hua X., Chen Y., Pi B., Jiang Y., Yu Y. Abrp, a new gene, confers reduced susceptibility to tetracycline, glycylcine, chloramphenicol and fosfomycin classes in Acinetobacter baumannii. // Eur J Clin Microbiol Infect Dis. — 2016. — Aug; 35 (8): 1371–5. doi: 10.1007/s10096–016–2674–0.

11. Lei J., Han S., Wu W., Wang X., Xu J., Han L. Extensively drug-resistant Acinetobacter baumannii outbreak cross-transmitted in an intensive care unit and respiratory intensive care unit. // Am J Infect Control. — 2016. — Nov 1; 44 (11): 1280–1284. doi: 10.1016/j.ajic.2016.03.041.

12. Teerawattanapong N, Kengkla K, Dilokthornsakul P, Saokaew S, Apisarnthanarak A, Chaiyakunapruk N. Prevention and Control of Multidrug-Resistant Gram-Negative Bacteria in Adult Intensive Care Units: A Systematic Review and Network Meta-analysis. // Clin Infect Dis. — 2017. — May 15; 64 (suppl 2): S 51-S 60. doi: 10.1093/cid/cix112.

13. Katsiari M, Mavroidi A, Platsouka ED, Nikolaou C. Extensively drug-resistant Аcinetobacterbaumanniibacteremias in a multidisciplinary intensive care unit during a 6-year period: risk factors for fulminant sepsis. // J Glob Antimicrob Resist. — 2018. — Feb 19; pii: S 2213–7165 (18) 30034–1. doi: 10.1016/j.jgar.2018.02.006.

14. Brotfain E, Borer A, Koyfman L, Saidel-Odes L, Frenkel A, Gruenbaum SE, Rosenzweig V, Zlotnik A, Klein M. Multidrug Resistance Acinetobacter Bacteremia Secondary to Ventilator-Associated Pneumonia: Risk Factors and Outcome. // J Intensive Care Med. — 2017. — Oct; 32 (9): 528–534. doi: 10.1177/0885066616632193.

15. Inchai J, Pothirat C, Liwsrisakun C, Deesomchok A, Kositsakulchai W, Chalermpanchai N. Ventilator-associated pneumonia: epidemiology and prognostic indicators of 30-day mortality. // Jpn J Infect Dis. — 2015. — 68 (3): 181–6. doi: 10.7883/yoken.JJID.2014.282.

16. Sharpe JP, Magnotti LJ, Weinberg JA, Swanson JM, Schroeppel TJ, Clement LP, Wood GC, Fabian TC, Croce MA. Adherence to an established diagnostic threshold for ventilator-associated pneumonia contributes to low false-negative rates in trauma patients. // J Trauma Acute Care Surg. — 2015. — Mar; 78 (3): 468–73; discussion 473–4. doi: 10.1097/TA.0000000000000562.

17. Royer S, Faria AL, Seki LM, Chagas TP, Campos PA, Batistão DW, Asensi MD, GontijoFilho PP, Ribas RM. Spread of multidrug-resistant Acinetobacter baumannii and Pseudomonas aeruginosa clones in patients with ventilator-associated pneumonia in an adult intensive care unit at a university hospital. // Braz J Infect Dis. — 2015. — Jul-Aug; 19 (4): 350–7. doi: 10.1016/j.bjid.2015.03.009.

18. Sharpe JP, Magnotti LJ, Weinberg JA, Swanson JM, Wood GC, Fabian TC, Croce MA. Impact of pathogen-directed antimicrobial therapy for ventilator-associated pneumonia in trauma patients on charges and recurrence. // J Am Coll Surg. — 2015. — Apr; 220 (4): 489–95. doi: 10.1016/j.jamcollsurg.2014.12.016.

19. Chen Q., Cao H., Lu H., QiuZH., He JJ. Bioprosthetic tricuspid valve endocarditis caused by Acinetobacter baumannii complex, a case report and brief review of the literature. // J Cardiothorac Surg. — 2015. — Nov 4; 10: 149. doi: 10.1186/s13019–015–0377–8.

20. Richmond GE., Evans LP., Anderson MJ., Wand ME., Bonney LC., Ivens A., Chua KL., Webber MA., Sutton JM., Peterson ML., Piddock LJ. The Acinetobacter baumannii Two-Component System AdeRS Regulates Genes Required for Multidrug Efflux, Biofilm Formation, and Virulence in a Strain-Specific Manner. // MBio. — 2016. — Apr 19; 7 (2). pii: e00430–16. doi: 10.1128/mBio.00430–16.

21. Skowronek P., Wojciechowski A., Leszczyński P., Olszewski P., Sibiński M., Polguj M., Synder M. Can diagnostic ultrasound scanners be a potential vector of opportunistic bacterial infection? // Med Ultrason. — 2016. — Sep; 18 (3): 326–31. doi: 10.11152/mu.2013.2066.183.sko.

22. Bingham J., Abell G., Kienast L., Lerner L., Matuschek B. Mullins W., Parker A., Reynolds N., Salisbury D., Seidel J., Young E., Kirk J. Health care worker hand contamination at critical moments in outpatient care settings. // Am J Infect Control. — 2016. — Nov 1; 44 (11): 1198–1202. doi: 10.1016/j.ajic.2016.04.208.

23. Greene C., Vadlamudi G., Eisenberg M., Foxman B., Koopman J., Xi C. Fomite-fingerpad transfer efficiency (pick-up and deposit) of Acinetobacter baumannii-with and without a latex glove. // Am J Infect Control. — 2015. — Sep 1; 43 (9): 928–34. doi: 10.1016/j.ajic.2015.05.008.

24. Talbot TR, Carr D, Parmley CL, Martin BJ, Gray B, Ambrose A, Starmer J. Sustained Reduction of Ventilator-Associated Pneumonia Rates Using Real-Time Course Correction With a Ventilator Bundle Compliance Dashboard. // Infect Control HospEpidemiol. — 2015. —Nov; 36 (11): 1261–7. doi: 10.1017/ice.2015.180.

25. Lim KP, Kuo SW, Ko WJ, Sheng WH, Chang YY, Hong MC 5, Sun CC, Chen YC, Chang SC. Efficacy of ventilator-associated pneumonia care bundle for prevention of ventilator-associated pneumonia in the surgical intensive care units of a medical center. // J MicrobiolImmunol Infect. — 2015. — Jun; 48 (3): 316–21. doi: 10.1016/j.jmii.2013.09.007.

26. Tomulić Brusich K, Acan I, Višković Filipčić N. Ventilator-Associated Pneumonia: Comparing Cadaveric Liver Transplant and Non-Transplant Surgical Patients. // ActaClin Croat. — 2016. — Sep; 55 (3): 360–369. doi: 10.20471/acc.2016.55.03.03.

27. Allou N, Allyn J, Snauwaert A, Welsch C, Lucet JC, Kortbaoui R, Desmard M, Augustin P, Montravers P. Postoperative pneumonia following cardiac surgery in non-ventilated patients versus mechanically ventilated patients: is there any difference? // Crit Care. 2015. — Mar 11; 19: 116. doi: 10.1186/s13054–015–0845–5.

28. Yagmurdur H, Tezcan AH1, Karakurt O, Leblebici F. The efficiency of routine endotracheal aspirate cultures compared to bronchoalveolar lavage cultures in ventilator-associated pneumonia diagnosis. // Niger J Clin Pract. — 2016. — Jan-Feb; 19 (1): 46–51. doi: 10.4103/1119–3077.164327.

29. Prieto Amorin J, Lopez M, Rando K, Castelli J, Medina Presentado J. Early Bacterial Pneumonia After Hepatic Transplantation: Epidemiologic Profile. // Transplant Proc. — 2018. — Mar; 50 (2): 503–508. doi: 10.1016/j.transproceed.2017.11.047.


Для цитирования:


Габриэлян Н.И., Шарапченко С.О., Драбкина И.В., Кубанова М.Х., Крупенио Т.В., Ромашкина Л.Ю., Сафонова Т.Б., Петрухина М.И., Столярова Л.Г. Грамотрицательные госпитальные патогены в риске развития тяжелых бактериальных инфекций. Медицинский алфавит. 2019;1(15):31-35. https://doi.org/10.33667/2078-5631-2019-1-15(390)-31-35

For citation:


Gabrielyan N.I., Sharapchenko S.O., Drabkina I.V., Kubanova M.K., Krupenio T.V., Romashkina L.Yu., Safonova T.B., Petrukhina M.I., Stolyarova L.G. Gram-negative hospital pathogens at risk of severe bacterial infection. Medical alphabet. 2019;1(15):31-35. (In Russ.) https://doi.org/10.33667/2078-5631-2019-1-15(390)-31-35

Просмотров: 258


ISSN 2078-5631 (Print)