Preview

Медицинский алфавит

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Доступ платный или только для Подписчиков

Диагностическое значение выявления аутоантител и современные автоматизированные методы их исследования

https://doi.org/10.33667/2078-5631-2022-6-40-46

Полный текст:

Аннотация

Аутоантитела (ААТ) представляют собой иммуноглобулины человека, способные специфически связываться с антигенными эпитопами молекул собственного организма. Многие ААТ имеют диагностическое значение и являются серологическими маркерами, а также отражают основные механизмы потери толерантности и воспаления у пациентов с аутоиммунными заболеваниями. Метод непрямой иммунофлюоресценции (НРИФ) был первым методом, применяемым для обнаружения ААТ. В течение 1970-х и 1980-х годов произошла эволюция в качественных методах с введением иммуноблоттинга или дот-блоттинга, а также были введены количественные иммунометрические анализы (IMA) второго поколения (радиоиммуноанализ, иммуноферментный анализ, флюроиммунологический анализ, иммунохемилюминесцентный анализ). Растущий спрос на исследование ААТ в целом способствовал развитию автоматизированного и мультиплексного тестирования. Примером является мультипараметрическая автоматическая станция Chorus trio (Cormay Group, Швейцария), объединяющая ИФА метод и реакцию связывания комплемента (РСК) на одной платформе. К преимуществам данного прибора относятся широкая панель востребованных тестов, минимальные трудозатраты сотрудников лаборатории, возможность использования анализатора для выполнения анализов врежиме «cito», выполнение РСК-тестов вавтоматическом режиме, высокая точность и воспроизводимость результатов, компактный дизайн анализатора. Мультипараметрическая автоматическая станция Chorus trio была внедрена в рутинную практику нашей лаборатории для диагностики аутоиммунных заболеваний в качестве подтверждающего тестирования. Таким образом, эффективность новых технологий, возможности автоматизации и повышение скорости и качества тестирования, а также обширная информация, предоставляемая с помощью инновационных мультипараметрических систем, принесет значительные преимущества для врачей клинической лабораторной диагностики и врачей-клиницистов.

Об авторах

О. Ю. Ткаченко
ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Минздрава России
Россия

Ткаченко Ольга Юрьевна, к.м.н., врач клинической лабораторной диагностики клинико-диагностической лаборатории НМЦ по молекулярной медицине.

SPIN: 6593–8770

Санкт-Петербург



С. В. Лапин
ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Минздрава России
Россия

Лапин Сергей Владимирович, к.м.н., зав. лабораторией диагностики аутоиммунных заболеваний, НМЦ по молекулярной медицине.

SPIN: 9852–7501

Санкт-Петербург



А. В. Мазинг
ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Минздрава России
Россия

Мазинг Александра Васильевна, к.м.н., в.н.с. лаборатории молекулярной диагностики, НМЦ по молекулярной медицине

еLibrary SPIN: 4458–4633

Санкт-Петербург



Т. В. Блинова
ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Минздрава России
Россия

Блинова Татьяна Владимировна, к.м.н., с.н.с. лаборатории диагностики аутоиммунных заболеваний, НМЦ помолекулярной медицине

Санкт-Петербург



А. Н. Мошникова
ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Минздрава России
Россия

Мошникова Анна Николаевна, врач клинической лабораторной диагностики, клинико-диагностическая лаборатория, НМЦ по молекулярной медицине

SPIN: 7252–3525

Санкт-Петербург



Д. А. Кузнецова
ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Минздрава России
Россия

Кузнецова Дарья Александровна, к.м.н., врач клинической лабораторной диагностики, клинико-диагностическая лаборатория, НМЦ по молекулярной медицине

Санкт-Петербург



И. В. Холопова
ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Минздрава России
Россия

Холопова Ирина Валерьевна, врач клинической лабораторной диагностики, клинико-диагностическая лаборатория, НМЦ по Молекулярной Медицине

Санкт-Петербург



Список литературы

1. Elkon K., Casali P. Nature and functions of autoantibodies. Nat. Clin. Pract. Rheumatol. 2008; (4): 491–498. https://doi:10.1038/ncprheum0895.

2. Ludwig R. J., Vanhoorelbeke K., Leypoldt F., Kaya Z., Bieber K., McLachlan S.M., Komorowski L., Luo J., CabralMarques O., Hammers C.M., Lindstrom J.M., Lamprecht P., Fischer A., Riemekasten G., Tersteeg C., Sondermann P., Rapopor B. t, Wandinger K.-P., Probst C., Beidaq A. El, Schmidt E., Verkman A., Manz R.A., Nimmerjahn F. Mechanisms of Autoantibody-Induced Pathology, Front. Immunol. 2017; (8). doi:10.3389/fimmu.2017.00603.

3. Pashnina I.A., Krivolapova I.M., Fedotkina T. V., Ryabkova V.A., Chereshneva M. V., Churilov L.P., Chereshnev V. A. Antinuclear Autoantibodies in Health: Autoimmunity Is Not a Synonym of Autoimmune Disease, Antibodies. 2021; (10):9. doi:10.3390/antib10010009.

4. Pengo V., Banzato A., Denas G., Jose S.P., Bison E., Hoxha A., Ruffatti A. Correct laboratory approach to APS diagnosis and monitoring, Autoimmun. Rev. 2013; (12): 832–834. doi:10.1016/j. autrev.2012.11.008.

5. Hang L., Nakamura R.M., Tubbs R. Current Concepts and Advances in Clinical Laboratory Testing for Autoimmune Diseases, Crit. Rev. Clin. Lab. Sci. 1997; (34):275–311. https://doi:10.3109/10408369708998095.

6. Bizzaro N., Tozzoli R., Shoenfeld Y. Are we at a stage to predict autoimmune rheumatic diseases? Arthritis Rheum. 2007; (56): 1736–1744. https://doi:10.1002/ art.22708.

7. Fritzler M. J. Challenges to the use of autoantibodies as predictors of disease onset, diagnosis and outcomes, Autoimmun. Rev. 2008; (7):616–620. https://doi:10.1016/j.autrev.2008.06.007.

8. Shero J., Bordwell B., Rothfield N., Earnshaw W. High titers of autoantibodies to topoisomerase I (Scl 70) in sera from scleroderma patients, Science. 1986; (231): 737–740. https://doi:10.1126/science.3003910.

9. Agmon-Levin N., Damoiseaux J., Kallenberg C., Sack U., Witte T., Herold M., Bossuyt X., Musset L., Cervera R., Plaza-Lopez A., Dias C., Sousa M. J., Radice A., Eriksson C., Hultgren O., Viander M., Khamashta M., Regenass S., Andrade L.E.C., Wiik A., Tincani A., Rönnelid J., Bloch D.B., Fritzler M. J., Chan E.K.L., Garcia-De La Torre I., Konstantinov K.N., Lahita R., Wilson M., Vainio O., Fabien N., Sinico R.A., Meroni P., Shoenfeld Y. International recommendations for the assessment of autoantibodies to cellular antigens referred to as anti-nuclear antibodies, Ann. Rheum. Dis.2014;(1):17–23. doi:10.1136/annrheumdis 2013–203863.

10. D.H. Solomon, A. J. Kavanaugh, P.H. Schur, Evidence-based guidelines for the use of immunologic tests: Antinuclear antibody testing, Arthritis Rheum. 47 (2002) 434–444. doi:10.1002/art.10561.

11. Savige J.A., Paspaliaris B., Silvestrini R., Davies D., Nikoloutsopoulos T., Sturgess A., Neil J., Pollock W., Dunster K., Hendle M. A review of immunofluorescent patterns associated with antineutrophil cytoplasmic antibodies (ANCA) and their differentiation from other antibodies., J. Clin. Pathol. 1998; (51):568–575. https://doi:10.1136/jcp.51.8.568.

12. Mitsuyama K. Antibody markers in the diagnosis of inflammatory bowel disease, World J. Gastroenterol. 2016; (22): 1304. https://doi:10.3748/wjg.v22.i3.1304.

13. Favaloro E. J., Wong R. C.W. Antiphospholipid antibody testing for the antiphospholipid syndrome: a comprehensive practical review including a synopsis of challenges and recent guidelines., Pathology. 2014; (46): 481–95. https://doi:10.1097/PAT.0000000000000142.

14. Miyakis S., Lockshin M. D., Atsumi T., Branch D.W., Brey R. L., Cervera R., Derksen R. H.W.M., De Groot P. G., Koike T., Meroni P. L., Reber G., Shoenfeld Y., Tincani A., Vlachoyiannopoulos P. G., Krilis S. A. International consensus statement on an update of the classification criteria for definite antiphospholipid syndrome (APS), J. Thromb. Haemost. 2006; (4): 295–306. https://doi:10.1111/ j.1538–7836.2006.01753.x.

15. Muratori L., Granito A., Muratori P., Pappas G., Bianchi F.B., Antimitochondrial Antibodies and Other Antibodies in Primary Biliary Cirrhosis: Diagnostic and Prognostic Value, Clin. Liver Dis. 2008; (12): 261–276. https://doi:10.1016/j. cld.2008.02.009.

16. Ragusa F., Fallahi P., Elia G., Gonnella D., Paparo S.R., Giusti C., Churilov L.P., Ferrari S. M., Antonelli A. Hashimotos’ thyroiditis: Epidemiology, pathogenesis, clinic and therapy, Best Pract. Res. Clin. Endocrinol. Metab. 2019; (33): 101367. doi:10.1016/j.beem.2019.101367.

17. Bartalena L. Diagnosis and management of Graves disease: a global overview, Nat. Rev. Endocrinol. 2013; (9): 724–734. https://doi:10.1038/nrendo.2013.193.

18. Knip M., Siljander H. Autoimmune mechanisms in type 1 diabetes, Autoimmun. Rev. 2008; (7): 550–557. doi:10.1016/j.autrev.2008.04.008.

19. Kusunoki S., Kaida K. Antibodies against ganglioside complexes in Guillain-Barré syndrome and related disorders, J. Neurochem. 2011; (116): 828–832. https://doi:10.1111/j.1471–4159.2010.07029.x.

20. Haven T. R., Astill M. E., Pasi B. M., Carper J. B., Wu L. L., Tebo A. E., Hill H. R. An Algorithm for Acetylcholine Receptor Antibody Testing in Patients with Suspected Myasthenia Gravis, Clin. Chem. 2010; (56): 1028–1029. https://doi:10.1373/ clinchem.2009.140392.

21. Granerod J., Ambrose H. E., Davies N.W., Clewley J.P., Walsh A. L., Morgan D., Cunningham R., Zuckerman M., Mutton K. J., Solomon T., Ward K.N., Lunn M.P., Irani S. R., Vincent A., Brown D. W., Crowcroft N. S. Causes of encephalitis and differences in their clinical presentations in England: a multicentre, population-based prospective study, Lancet Infect. Dis. 2010; (10): 835–844. https://doi:10.1016/S 1473–3099(10)70222-X.

22. Husby S., Koletzko S., Korponay-Szabó I., Kurppa K., Mearin M. L., Ribes-Koninckx C., Shamir R., Troncone R., Auricchio R., Castillejo G., Christensen R., Dolinsek J., Gillett P., Hróbjartsson A., Koltai T., Maki M., Nielsen S.M., Popp A., Størdal K., Werkstetter K., Wessels M. European Society Paediatric Gastroenterology, Hepatology and Nutrition Guidelines for Diagnosing Coeliac Disease 2020, J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 2020; (70): 141–156. https://doi:10.1097/MPG.0000000000002497.

23. E. Schmidt, M. Kasperkiewicz, P. Joly, Pemphigus, Lancet. 2019; (394): 882–894. https://doi:10.1016/S 0140–6736(19)31778–7.

24. R. Tozzoli, C. Bonaguri, A. Melegari, A. Antico, D. Bassetti, N. Bizzaro, Current state of diagnostic technologies in the autoimmunology laboratory, Clin. Chem. Lab. Med. 2013; (51): 1437–4331 https://doi:10.1515/cclm 2012–0191.

25. Robbins W. C., Holman H.R., Deicher H., Kunkel H. G. Complement Fixation with Cell Nuclei and DNA in Lupus Erythematosus, Exp. Biol. Med. 1957; (96): 575–579. https://doi:10.3181/00379727–96–23545.

26. Anderson J. R., Goudie R. B., Gray K., Timbury G. C. Auto-antibodies in addison’s disease, Lancet. 1957;(26919): 1123–1124. https://doi:10.1016/S 0140– 6736(57)91687–2.

27. Ceppellini R., Polli E., Celada F. A DNA-Reacting Factor in Serum of a Patient with Lupus Erythematosus Diffusus., Exp. Biol. Med. 1957; (96): 572–574. https://doi:10.3181/00379727–96–23544.

28. Charles P. J., van Venrooij W. J., Maini R. N. The Consensus Workshops for the Detection of Autoantibodies to Intracellular Antigens in Rheumatic Diseases: 1989–1992., Clin. Exp. Rheumatol. 1989 (10): 507–11. http://www.ncbi.nlm.nih. gov/pubmed/1458707.

29. Bizzaro N., Tozzoli R., Tonutti E., Piazza A., F. Manoni, A. Ghirardello, D. Bassetti, D. Villalta, M. Pradella, P. Rizzotti, Variability between methods to determine ANA, anti-dsDNA and anti-ENA autoantibodies: a collaborative study with the biomedical industry, J. Immunol. Methods. 1998; (219): 99–107. https://doi:10.1016/S 0022–1759(98)00140–9.

30. Boire G., Lopez-Longo F.-J., Lapointe S., Ménard H.-A. Sera from patients with autoimmune disease recognize conformational determinants on the 60-kd ro/ss-a protein, Arthritis Rheum. 1991; (119434): 722–730. https://doi:10.1002/art.1780340613.

31. J.W.C.T. J. Damoiseaux, K. Boesten, J. Giesen, J. Austen, Evaluation of a Novel LineBlot Immunoassay for the Detection of Antibodies to Extractable Nuclear Antigens, Ann. N.Y. Acad. Sci. 2005; (1050): 340–347. https://doi:10.1196/annals.1313.036.

32. Pollard K.M., Casiano C.A., Muro Y., Satoh M., Tanaka S., Chan E.K.L. The uses and misuses of multiplex autoantibody assays in systemic autoimmune rheumatic diseases, Front. Immunol. 2015; (6): 181. https://doi:10.3389/fimmu.2015.00181.


Рецензия

Для цитирования:


Ткаченко О.Ю., Лапин С.В., Мазинг А.В., Блинова Т.В., Мошникова А.Н., Кузнецова Д.А., Холопова И.В. Диагностическое значение выявления аутоантител и современные автоматизированные методы их исследования. Медицинский алфавит. 2022;1(6):40-46. https://doi.org/10.33667/2078-5631-2022-6-40-46

For citation:


Tkachenko O.Yu., Lapin S.V., Masing A.V., Blinova T.V., Moshnikova A.N., Kuznetsova D.A., Kholopova I.V. Diagnostic value of autoantibodies and novel automated methods of their detection. Medical alphabet. 2022;1(6):40-46. (In Russ.) https://doi.org/10.33667/2078-5631-2022-6-40-46

Просмотров: 28


ISSN 2078-5631 (Print)