medalphabetМедицинский алфавитMedical alphabet2078-56312949-2807ООО «Альфмед»10.33667/2078-5631-2022-6-40-46medalphabet-2563Research ArticleСтатьиДиагностическое значение выявления аутоантител и современные автоматизированные методы их исследованияDiagnostic value of autoantibodies and novel automated methods of their detectionhttps://orcid.org/0000-0002-1479-6551ТкаченкоО. Ю.TkachenkoO. Yu.

Ткаченко Ольга Юрьевна, к.м.н., врач клинической лабораторной диагностики клинико-диагностической лаборатории НМЦ по молекулярной медицине.

SPIN: 6593–8770

Санкт-Петербург

Tkachenko Olga Yu., PhD Med, senior researcher of clinical diagnostic laboratory, Center for Molecular Medicine

St. Petersburg

tkachenie@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0002-4998-3699ЛапинС. В.LapinS. V.

Лапин Сергей Владимирович, к.м.н., зав. лабораторией диагностики аутоиммунных заболеваний, НМЦ по молекулярной медицине.

SPIN: 9852–7501

Санкт-Петербург

Lapin Sergey V., PhD Med, head of the Laboratory for Diagnosis of Autoimmune

St. Petersburg

svlapin@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0002-3055-6507МазингА. В.MasingA. V.

Мазинг Александра Васильевна, к.м.н., в.н.с. лаборатории молекулярной диагностики, НМЦ по молекулярной медицине

еLibrary SPIN: 4458–4633

Санкт-Петербург

Masing Alexandra V, PhD Med, leading research scientist, Laboratory for Molecular Diagnostics, Center for Molecular Medicine

St. Petersburg

alex_mazing@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0003-4896-3319БлиноваТ. В.BlinovaT. V.

Блинова Татьяна Владимировна, к.м.н., с.н.с. лаборатории диагностики аутоиммунных заболеваний, НМЦ помолекулярной медицине

Санкт-Петербург

Blinova Tatyana V., PhD Med, senior research scientist, Laboratory for Diagnostics of Autoimmune Diseases, Center for Molecular Medicine.

St. Petersburg

tvblinova@list.ruhttps://orcid.org/0000-0002-4604-0660МошниковаА. Н.MoshnikovaA. N.

Мошникова Анна Николаевна, врач клинической лабораторной диагностики, клинико-диагностическая лаборатория, НМЦ по молекулярной медицине

SPIN: 7252–3525

Санкт-Петербург

Moshnikova Anna N., MD, clinical diagnostic laboratory, Center for Molecular Medicine

St. Petersburg

moshnikova-anna@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0001-5318-354XКузнецоваД. А.KuznetsovaD. A.

Кузнецова Дарья Александровна, к.м.н., врач клинической лабораторной диагностики, клинико-диагностическая лаборатория, НМЦ по молекулярной медицине

Санкт-Петербург

Kuznetsova Daria A., PhD Med, clinical diagnostic laboratory, Center for Molecular Medicine

St. Petersburg

lariwar@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0001-9520-453XХолоповаИ. В.KholopovaI. V.

Холопова Ирина Валерьевна, врач клинической лабораторной диагностики, клинико-диагностическая лаборатория, НМЦ по Молекулярной Медицине

Санкт-Петербург

Kholopova Irina V., MD, clinical diagnostic laboratory, Center for Molecular Medicin

St. Petersburg

irinakholopova@yandex.ruФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Минздрава РоссииРоссияFirst St. Petersburg State Medical University n. a. academician I.P. PavlovRussian Federation20222204202216Современная лаборатория (1)4046Copyright © Ткаченко О.Ю., Лапин С.В., Мазинг А.В., Блинова Т.В., Мошникова А.Н., Кузнецова Д.А., Холопова И.В., 20222022Ткаченко О.Ю., Лапин С.В., Мазинг А.В., Блинова Т.В., Мошникова А.Н., Кузнецова Д.А., Холопова И.В.Tkachenko O.Y., Lapin S.V., Masing A.V., Blinova T.V., Moshnikova A.N., Kuznetsova D.A., Kholopova I.V.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://www.med-alphabet.com/jour/article/view/2563

Аутоантитела (ААТ) представляют собой иммуноглобулины человека, способные специфически связываться с антигенными эпитопами молекул собственного организма. Многие ААТ имеют диагностическое значение и являются серологическими маркерами, а также отражают основные механизмы потери толерантности и воспаления у пациентов с аутоиммунными заболеваниями. Метод непрямой иммунофлюоресценции (НРИФ) был первым методом, применяемым для обнаружения ААТ. В течение 1970-х и 1980-х годов произошла эволюция в качественных методах с введением иммуноблоттинга или дот-блоттинга, а также были введены количественные иммунометрические анализы (IMA) второго поколения (радиоиммуноанализ, иммуноферментный анализ, флюроиммунологический анализ, иммунохемилюминесцентный анализ). Растущий спрос на исследование ААТ в целом способствовал развитию автоматизированного и мультиплексного тестирования. Примером является мультипараметрическая автоматическая станция Chorus trio (Cormay Group, Швейцария), объединяющая ИФА метод и реакцию связывания комплемента (РСК) на одной платформе. К преимуществам данного прибора относятся широкая панель востребованных тестов, минимальные трудозатраты сотрудников лаборатории, возможность использования анализатора для выполнения анализов врежиме «cito», выполнение РСК-тестов вавтоматическом режиме, высокая точность и воспроизводимость результатов, компактный дизайн анализатора. Мультипараметрическая автоматическая станция Chorus trio была внедрена в рутинную практику нашей лаборатории для диагностики аутоиммунных заболеваний в качестве подтверждающего тестирования. Таким образом, эффективность новых технологий, возможности автоматизации и повышение скорости и качества тестирования, а также обширная информация, предоставляемая с помощью инновационных мультипараметрических систем, принесет значительные преимущества для врачей клинической лабораторной диагностики и врачей-клиницистов.

Autoantibodies (aAb) are human immunoglobulins that can specifically bind to antigenic epitopes of molecules of their own body. Most of AATs have diagnostic value and are serological markers, as well as reflect the main mechanisms of loss of tolerance and inflammation in patients with autoimmune diseases. Indirect immunofluorescence (IIF) was the first method used to detect aAb. During the 1970s and 1980s, there was an evolution in qualitative methods with the introduction of immunoblotting or dot blotting, and second generation quantitative immunometric assays (radioimmunoassay,, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), fluoroimmunoassay, immunochemiluminescence assay) were suggested. The growing number of aAbs, as well as the growing request for aAb research in general, has fueled the development of automated and multiplex testing. An example is the Chorus trio multi-parameter automatic station (Italy), which combines the ELISA method and the complement fixation reaction (CFR) on one platform. The advantages of this device include a large panel of tests, minimal labor costs, the ability to use the analyzer to perform analyzes in the “cito” mode, perform CFR tests in an automatic mode, high accuracy and reproducibility of results, and a compact design of the analyzer. The Chorus trio multi-parameter automatic station has been implemented into the routine practice of our laboratory for the diagnosis of autoimmune diseases as a confirmatory test. Thus, the effectiveness of new technologies, the possibility of automation and an increase in the speed and quality of testing, as well as the extensive information provided by innovative multi-parameter systems, will bring significant benefits for clinical laboratory diagnostics and clinicians.

аутоантителаиммуноферментный анализавтоматизированные методыautoantibodiesenzyme-linked immunosorbent assayautomated methodsReferencesElkon K., Casali P. Nature and functions of autoantibodies. Nat. Clin. Pract. Rheumatol. 2008; (4): 491–498. https://doi:10.1038/ncprheum0895.Elkon K., Casali P. Nature and functions of autoantibodies. Nat. Clin. Pract. Rheumatol. 2008; (4): 491–498. https://doi:10.1038/ncprheum0895.Ludwig R. J., Vanhoorelbeke K., Leypoldt F., Kaya Z., Bieber K., McLachlan S.M., Komorowski L., Luo J., CabralMarques O., Hammers C.M., Lindstrom J.M., Lamprecht P., Fischer A., Riemekasten G., Tersteeg C., Sondermann P., Rapopor B. t, Wandinger K.-P., Probst C., Beidaq A. El, Schmidt E., Verkman A., Manz R.A., Nimmerjahn F. Mechanisms of Autoantibody-Induced Pathology, Front. Immunol. 2017; (8). doi:10.3389/fimmu.2017.00603.Ludwig R. J., Vanhoorelbeke K., Leypoldt F., Kaya Z., Bieber K., McLachlan S.M., Komorowski L., Luo J., CabralMarques O., Hammers C.M., Lindstrom J.M., Lamprecht P., Fischer A., Riemekasten G., Tersteeg C., Sondermann P., Rapopor B. t, Wandinger K.-P., Probst C., Beidaq A. El, Schmidt E., Verkman A., Manz R.A., Nimmerjahn F. Mechanisms of Autoantibody-Induced Pathology, Front. Immunol. 2017; (8). doi:10.3389/fimmu.2017.00603.Pashnina I.A., Krivolapova I.M., Fedotkina T. V., Ryabkova V.A., Chereshneva M. V., Churilov L.P., Chereshnev V. A. Antinuclear Autoantibodies in Health: Autoimmunity Is Not a Synonym of Autoimmune Disease, Antibodies. 2021; (10):9. doi:10.3390/antib10010009.Pashnina I.A., Krivolapova I.M., Fedotkina T. V., Ryabkova V.A., Chereshneva M. V., Churilov L.P., Chereshnev V. A. Antinuclear Autoantibodies in Health: Autoimmunity Is Not a Synonym of Autoimmune Disease, Antibodies. 2021; (10):9. doi:10.3390/antib10010009.Pengo V., Banzato A., Denas G., Jose S.P., Bison E., Hoxha A., Ruffatti A. Correct laboratory approach to APS diagnosis and monitoring, Autoimmun. Rev. 2013; (12): 832–834. doi:10.1016/j. autrev.2012.11.008.Pengo V., Banzato A., Denas G., Jose S.P., Bison E., Hoxha A., Ruffatti A. Correct laboratory approach to APS diagnosis and monitoring, Autoimmun. Rev. 2013; (12): 832–834. doi:10.1016/j. autrev.2012.11.008.Hang L., Nakamura R.M., Tubbs R. Current Concepts and Advances in Clinical Laboratory Testing for Autoimmune Diseases, Crit. Rev. Clin. Lab. Sci. 1997; (34):275–311. https://doi:10.3109/10408369708998095.Hang L., Nakamura R.M., Tubbs R. Current Concepts and Advances in Clinical Laboratory Testing for Autoimmune Diseases, Crit. Rev. Clin. Lab. Sci. 1997; (34):275–311. https://doi:10.3109/10408369708998095.Bizzaro N., Tozzoli R., Shoenfeld Y. Are we at a stage to predict autoimmune rheumatic diseases? Arthritis Rheum. 2007; (56): 1736–1744. https://doi:10.1002/ art.22708.Bizzaro N., Tozzoli R., Shoenfeld Y. Are we at a stage to predict autoimmune rheumatic diseases? Arthritis Rheum. 2007; (56): 1736–1744. https://doi:10.1002/ art.22708.Fritzler M. J. Challenges to the use of autoantibodies as predictors of disease onset, diagnosis and outcomes, Autoimmun. Rev. 2008; (7):616–620. https://doi:10.1016/j.autrev.2008.06.007.Fritzler M. J. Challenges to the use of autoantibodies as predictors of disease onset, diagnosis and outcomes, Autoimmun. Rev. 2008; (7):616–620. https://doi:10.1016/j.autrev.2008.06.007.Shero J., Bordwell B., Rothfield N., Earnshaw W. High titers of autoantibodies to topoisomerase I (Scl 70) in sera from scleroderma patients, Science. 1986; (231): 737–740. https://doi:10.1126/science.3003910.Shero J., Bordwell B., Rothfield N., Earnshaw W. High titers of autoantibodies to topoisomerase I (Scl 70) in sera from scleroderma patients, Science. 1986; (231): 737–740. https://doi:10.1126/science.3003910.Agmon-Levin N., Damoiseaux J., Kallenberg C., Sack U., Witte T., Herold M., Bossuyt X., Musset L., Cervera R., Plaza-Lopez A., Dias C., Sousa M. J., Radice A., Eriksson C., Hultgren O., Viander M., Khamashta M., Regenass S., Andrade L.E.C., Wiik A., Tincani A., Rönnelid J., Bloch D.B., Fritzler M. J., Chan E.K.L., Garcia-De La Torre I., Konstantinov K.N., Lahita R., Wilson M., Vainio O., Fabien N., Sinico R.A., Meroni P., Shoenfeld Y. International recommendations for the assessment of autoantibodies to cellular antigens referred to as anti-nuclear antibodies, Ann. Rheum. Dis.2014;(1):17–23. doi:10.1136/annrheumdis 2013–203863.Agmon-Levin N., Damoiseaux J., Kallenberg C., Sack U., Witte T., Herold M., Bossuyt X., Musset L., Cervera R., Plaza-Lopez A., Dias C., Sousa M. J., Radice A., Eriksson C., Hultgren O., Viander M., Khamashta M., Regenass S., Andrade L.E.C., Wiik A., Tincani A., Rönnelid J., Bloch D.B., Fritzler M. J., Chan E.K.L., Garcia-De La Torre I., Konstantinov K.N., Lahita R., Wilson M., Vainio O., Fabien N., Sinico R.A., Meroni P., Shoenfeld Y. International recommendations for the assessment of autoantibodies to cellular antigens referred to as anti-nuclear antibodies, Ann. Rheum. Dis.2014;(1):17–23. doi:10.1136/annrheumdis 2013–203863.D.H. Solomon, A. J. Kavanaugh, P.H. Schur, Evidence-based guidelines for the use of immunologic tests: Antinuclear antibody testing, Arthritis Rheum. 47 (2002) 434–444. doi:10.1002/art.10561.D.H. Solomon, A. J. Kavanaugh, P.H. Schur, Evidence-based guidelines for the use of immunologic tests: Antinuclear antibody testing, Arthritis Rheum. 47 (2002) 434–444. doi:10.1002/art.10561.Savige J.A., Paspaliaris B., Silvestrini R., Davies D., Nikoloutsopoulos T., Sturgess A., Neil J., Pollock W., Dunster K., Hendle M. A review of immunofluorescent patterns associated with antineutrophil cytoplasmic antibodies (ANCA) and their differentiation from other antibodies., J. Clin. Pathol. 1998; (51):568–575. https://doi:10.1136/jcp.51.8.568.Savige J.A., Paspaliaris B., Silvestrini R., Davies D., Nikoloutsopoulos T., Sturgess A., Neil J., Pollock W., Dunster K., Hendle M. A review of immunofluorescent patterns associated with antineutrophil cytoplasmic antibodies (ANCA) and their differentiation from other antibodies., J. Clin. Pathol. 1998; (51):568–575. https://doi:10.1136/jcp.51.8.568.Mitsuyama K. Antibody markers in the diagnosis of inflammatory bowel disease, World J. Gastroenterol. 2016; (22): 1304. https://doi:10.3748/wjg.v22.i3.1304.Mitsuyama K. Antibody markers in the diagnosis of inflammatory bowel disease, World J. Gastroenterol. 2016; (22): 1304. https://doi:10.3748/wjg.v22.i3.1304.Favaloro E. J., Wong R. C.W. Antiphospholipid antibody testing for the antiphospholipid syndrome: a comprehensive practical review including a synopsis of challenges and recent guidelines., Pathology. 2014; (46): 481–95. https://doi:10.1097/PAT.0000000000000142.Favaloro E. J., Wong R. C.W. Antiphospholipid antibody testing for the antiphospholipid syndrome: a comprehensive practical review including a synopsis of challenges and recent guidelines., Pathology. 2014; (46): 481–95. https://doi:10.1097/PAT.0000000000000142.Miyakis S., Lockshin M. D., Atsumi T., Branch D.W., Brey R. L., Cervera R., Derksen R. H.W.M., De Groot P. G., Koike T., Meroni P. L., Reber G., Shoenfeld Y., Tincani A., Vlachoyiannopoulos P. G., Krilis S. A. International consensus statement on an update of the classification criteria for definite antiphospholipid syndrome (APS), J. Thromb. Haemost. 2006; (4): 295–306. https://doi:10.1111/ j.1538–7836.2006.01753.x.Miyakis S., Lockshin M. D., Atsumi T., Branch D.W., Brey R. L., Cervera R., Derksen R. H.W.M., De Groot P. G., Koike T., Meroni P. L., Reber G., Shoenfeld Y., Tincani A., Vlachoyiannopoulos P. G., Krilis S. A. International consensus statement on an update of the classification criteria for definite antiphospholipid syndrome (APS), J. Thromb. Haemost. 2006; (4): 295–306. https://doi:10.1111/ j.1538–7836.2006.01753.x.Muratori L., Granito A., Muratori P., Pappas G., Bianchi F.B., Antimitochondrial Antibodies and Other Antibodies in Primary Biliary Cirrhosis: Diagnostic and Prognostic Value, Clin. Liver Dis. 2008; (12): 261–276. https://doi:10.1016/j. cld.2008.02.009.Muratori L., Granito A., Muratori P., Pappas G., Bianchi F.B., Antimitochondrial Antibodies and Other Antibodies in Primary Biliary Cirrhosis: Diagnostic and Prognostic Value, Clin. Liver Dis. 2008; (12): 261–276. https://doi:10.1016/j. cld.2008.02.009.Ragusa F., Fallahi P., Elia G., Gonnella D., Paparo S.R., Giusti C., Churilov L.P., Ferrari S. M., Antonelli A. Hashimotos’ thyroiditis: Epidemiology, pathogenesis, clinic and therapy, Best Pract. Res. Clin. Endocrinol. Metab. 2019; (33): 101367. doi:10.1016/j.beem.2019.101367.Ragusa F., Fallahi P., Elia G., Gonnella D., Paparo S.R., Giusti C., Churilov L.P., Ferrari S. M., Antonelli A. Hashimotos’ thyroiditis: Epidemiology, pathogenesis, clinic and therapy, Best Pract. Res. Clin. Endocrinol. Metab. 2019; (33): 101367. doi:10.1016/j.beem.2019.101367.Bartalena L. Diagnosis and management of Graves disease: a global overview, Nat. Rev. Endocrinol. 2013; (9): 724–734. https://doi:10.1038/nrendo.2013.193.Bartalena L. Diagnosis and management of Graves disease: a global overview, Nat. Rev. Endocrinol. 2013; (9): 724–734. https://doi:10.1038/nrendo.2013.193.Knip M., Siljander H. Autoimmune mechanisms in type 1 diabetes, Autoimmun. Rev. 2008; (7): 550–557. doi:10.1016/j.autrev.2008.04.008.Knip M., Siljander H. Autoimmune mechanisms in type 1 diabetes, Autoimmun. Rev. 2008; (7): 550–557. doi:10.1016/j.autrev.2008.04.008.Kusunoki S., Kaida K. Antibodies against ganglioside complexes in Guillain-Barré syndrome and related disorders, J. Neurochem. 2011; (116): 828–832. https://doi:10.1111/j.1471–4159.2010.07029.x.Kusunoki S., Kaida K. Antibodies against ganglioside complexes in Guillain-Barré syndrome and related disorders, J. Neurochem. 2011; (116): 828–832. https://doi:10.1111/j.1471–4159.2010.07029.x.Haven T. R., Astill M. E., Pasi B. M., Carper J. B., Wu L. L., Tebo A. E., Hill H. R. An Algorithm for Acetylcholine Receptor Antibody Testing in Patients with Suspected Myasthenia Gravis, Clin. Chem. 2010; (56): 1028–1029. https://doi:10.1373/ clinchem.2009.140392.Haven T. R., Astill M. E., Pasi B. M., Carper J. B., Wu L. L., Tebo A. E., Hill H. R. An Algorithm for Acetylcholine Receptor Antibody Testing in Patients with Suspected Myasthenia Gravis, Clin. Chem. 2010; (56): 1028–1029. https://doi:10.1373/ clinchem.2009.140392.Granerod J., Ambrose H. E., Davies N.W., Clewley J.P., Walsh A. L., Morgan D., Cunningham R., Zuckerman M., Mutton K. J., Solomon T., Ward K.N., Lunn M.P., Irani S. R., Vincent A., Brown D. W., Crowcroft N. S. Causes of encephalitis and differences in their clinical presentations in England: a multicentre, population-based prospective study, Lancet Infect. Dis. 2010; (10): 835–844. https://doi:10.1016/S 1473–3099(10)70222-X.Granerod J., Ambrose H. E., Davies N.W., Clewley J.P., Walsh A. L., Morgan D., Cunningham R., Zuckerman M., Mutton K. J., Solomon T., Ward K.N., Lunn M.P., Irani S. R., Vincent A., Brown D. W., Crowcroft N. S. Causes of encephalitis and differences in their clinical presentations in England: a multicentre, population-based prospective study, Lancet Infect. Dis. 2010; (10): 835–844. https://doi:10.1016/S 1473–3099(10)70222-X.Husby S., Koletzko S., Korponay-Szabó I., Kurppa K., Mearin M. L., Ribes-Koninckx C., Shamir R., Troncone R., Auricchio R., Castillejo G., Christensen R., Dolinsek J., Gillett P., Hróbjartsson A., Koltai T., Maki M., Nielsen S.M., Popp A., Størdal K., Werkstetter K., Wessels M. European Society Paediatric Gastroenterology, Hepatology and Nutrition Guidelines for Diagnosing Coeliac Disease 2020, J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 2020; (70): 141–156. https://doi:10.1097/MPG.0000000000002497.Husby S., Koletzko S., Korponay-Szabó I., Kurppa K., Mearin M. L., Ribes-Koninckx C., Shamir R., Troncone R., Auricchio R., Castillejo G., Christensen R., Dolinsek J., Gillett P., Hróbjartsson A., Koltai T., Maki M., Nielsen S.M., Popp A., Størdal K., Werkstetter K., Wessels M. European Society Paediatric Gastroenterology, Hepatology and Nutrition Guidelines for Diagnosing Coeliac Disease 2020, J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 2020; (70): 141–156. https://doi:10.1097/MPG.0000000000002497.E. Schmidt, M. Kasperkiewicz, P. Joly, Pemphigus, Lancet. 2019; (394): 882–894. https://doi:10.1016/S 0140–6736(19)31778–7.E. Schmidt, M. Kasperkiewicz, P. Joly, Pemphigus, Lancet. 2019; (394): 882–894. https://doi:10.1016/S 0140–6736(19)31778–7.R. Tozzoli, C. Bonaguri, A. Melegari, A. Antico, D. Bassetti, N. Bizzaro, Current state of diagnostic technologies in the autoimmunology laboratory, Clin. Chem. Lab. Med. 2013; (51): 1437–4331 https://doi:10.1515/cclm 2012–0191.R. Tozzoli, C. Bonaguri, A. Melegari, A. Antico, D. Bassetti, N. Bizzaro, Current state of diagnostic technologies in the autoimmunology laboratory, Clin. Chem. Lab. Med. 2013; (51): 1437–4331 https://doi:10.1515/cclm 2012–0191.Robbins W. C., Holman H.R., Deicher H., Kunkel H. G. Complement Fixation with Cell Nuclei and DNA in Lupus Erythematosus, Exp. Biol. Med. 1957; (96): 575–579. https://doi:10.3181/00379727–96–23545.Robbins W. C., Holman H.R., Deicher H., Kunkel H. G. Complement Fixation with Cell Nuclei and DNA in Lupus Erythematosus, Exp. Biol. Med. 1957; (96): 575–579. https://doi:10.3181/00379727–96–23545.Anderson J. R., Goudie R. B., Gray K., Timbury G. C. Auto-antibodies in addison’s disease, Lancet. 1957;(26919): 1123–1124. https://doi:10.1016/S 0140– 6736(57)91687–2.Anderson J. R., Goudie R. B., Gray K., Timbury G. C. Auto-antibodies in addison’s disease, Lancet. 1957;(26919): 1123–1124. https://doi:10.1016/S 0140– 6736(57)91687–2.Ceppellini R., Polli E., Celada F. A DNA-Reacting Factor in Serum of a Patient with Lupus Erythematosus Diffusus., Exp. Biol. Med. 1957; (96): 572–574. https://doi:10.3181/00379727–96–23544.Ceppellini R., Polli E., Celada F. A DNA-Reacting Factor in Serum of a Patient with Lupus Erythematosus Diffusus., Exp. Biol. Med. 1957; (96): 572–574. https://doi:10.3181/00379727–96–23544.Charles P. J., van Venrooij W. J., Maini R. N. The Consensus Workshops for the Detection of Autoantibodies to Intracellular Antigens in Rheumatic Diseases: 1989–1992., Clin. Exp. Rheumatol. 1989 (10): 507–11. http://www.ncbi.nlm.nih. gov/pubmed/1458707.Charles P. J., van Venrooij W. J., Maini R. N. The Consensus Workshops for the Detection of Autoantibodies to Intracellular Antigens in Rheumatic Diseases: 1989–1992., Clin. Exp. Rheumatol. 1989 (10): 507–11. http://www.ncbi.nlm.nih. gov/pubmed/1458707.Bizzaro N., Tozzoli R., Tonutti E., Piazza A., F. Manoni, A. Ghirardello, D. Bassetti, D. Villalta, M. Pradella, P. Rizzotti, Variability between methods to determine ANA, anti-dsDNA and anti-ENA autoantibodies: a collaborative study with the biomedical industry, J. Immunol. Methods. 1998; (219): 99–107. https://doi:10.1016/S 0022–1759(98)00140–9.Bizzaro N., Tozzoli R., Tonutti E., Piazza A., F. Manoni, A. Ghirardello, D. Bassetti, D. Villalta, M. Pradella, P. Rizzotti, Variability between methods to determine ANA, anti-dsDNA and anti-ENA autoantibodies: a collaborative study with the biomedical industry, J. Immunol. Methods. 1998; (219): 99–107. https://doi:10.1016/S 0022–1759(98)00140–9.Boire G., Lopez-Longo F.-J., Lapointe S., Ménard H.-A. Sera from patients with autoimmune disease recognize conformational determinants on the 60-kd ro/ss-a protein, Arthritis Rheum. 1991; (119434): 722–730. https://doi:10.1002/art.1780340613.Boire G., Lopez-Longo F.-J., Lapointe S., Ménard H.-A. Sera from patients with autoimmune disease recognize conformational determinants on the 60-kd ro/ss-a protein, Arthritis Rheum. 1991; (119434): 722–730. https://doi:10.1002/art.1780340613.J.W.C.T. J. Damoiseaux, K. Boesten, J. Giesen, J. Austen, Evaluation of a Novel LineBlot Immunoassay for the Detection of Antibodies to Extractable Nuclear Antigens, Ann. N.Y. Acad. Sci. 2005; (1050): 340–347. https://doi:10.1196/annals.1313.036.J.W.C.T. J. Damoiseaux, K. Boesten, J. Giesen, J. Austen, Evaluation of a Novel LineBlot Immunoassay for the Detection of Antibodies to Extractable Nuclear Antigens, Ann. N.Y. Acad. Sci. 2005; (1050): 340–347. https://doi:10.1196/annals.1313.036.Pollard K.M., Casiano C.A., Muro Y., Satoh M., Tanaka S., Chan E.K.L. The uses and misuses of multiplex autoantibody assays in systemic autoimmune rheumatic diseases, Front. Immunol. 2015; (6): 181. https://doi:10.3389/fimmu.2015.00181.Pollard K.M., Casiano C.A., Muro Y., Satoh M., Tanaka S., Chan E.K.L. The uses and misuses of multiplex autoantibody assays in systemic autoimmune rheumatic diseases, Front. Immunol. 2015; (6): 181. https://doi:10.3389/fimmu.2015.00181.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.